1。顕微鏡：
* 光学顕微鏡（LM）： これは最も基本的な形式の顕微鏡です。目に見える光を使用して、サンプルを照らして拡大します。
* 明るいフィールド顕微鏡： 最も一般的なタイプは、標本が明るい背景に対して暗い画像を生成します。
* 位相対照顕微鏡： この手法は、屈折率の違いを活用することにより、透明な標本のコントラストを強化します。
* 微分干渉コントラスト（DIC）顕微鏡： この手法は、偏光光を使用して、コントラストが強化された3Dのような画像を作成します。
* 蛍光顕微鏡： この手法では、特定の細胞成分に結合する蛍光色素を使用して、それらの成分の視覚化を可能にします。
* 電子顕微鏡（EM）： このタイプの顕微鏡検査では、電子を使用してサンプルを照らし、光学顕微鏡よりもはるかに高い解像度を提供します。これにより、ナノメートルレベルで構造を視覚化できます。
* 透過電子顕微鏡（TEM）： 電子のビームがサンプルに渡され、内部構造の2D画像が作成されます。
* 走査型電子顕微鏡（SEM）： 電子のビームがサンプルの表面を横切ってスキャンされ、表面の3D画像が作成されます。
2。染色技術：
* 染色 染料を使用して特定の細胞成分を着色し、顕微鏡の下で見えるようにします。いくつかの一般的な汚れは次のとおりです。
* ヘマトキシリンとエオシン（H＆E）染色： 細胞の核と細胞質を視覚化するために使用される一般的な組織染色。
* グラム染色： 細胞壁の構造に基づいて細菌を区別するために使用されます。
* 免疫蛍光染色： 細胞内の特定のタンパク質または分子に結合する蛍光抗体を使用します。
3。細胞分画：
*このプロセスには、オープンセルを破壊し、サイズと密度に基づいてコンポーネントを分離することが含まれます。これは、次のように達成されます。
* 遠心分離： サンプルを高速でスピンし、異なるコンポーネントをレイヤーに分離します。
* 微分遠心分離： さまざまな速度を使用して、特定のオルガネラを分離します。
4。分子技術：
* 免疫細胞化学： 抗体を使用して、細胞内の特定のタンパク質を検出します。
* in situハイブリダイゼーション： 標識DNAまたはRNAプローブを使用して、細胞内の特定の配列を検出します。
* 遺伝子編集技術： 細胞内の特定の遺伝子の操作を可能にし、科学者がこれらの遺伝子の機能を研究できるようにします。
5。その他のテクニック：
* X線結晶学： タンパク質およびその他の分子の3D構造を決定するために使用されます。
* Cryo-Electron顕微鏡（Cryo-EM）： ほぼ原子分解能で構造の視覚化を可能にする特殊な形式の電子顕微鏡法。
適切な手法の選択：
技術の選択は、特定の細胞タイプ、観察される構造、および望ましい詳細レベルに依存します。たとえば、細胞の全体的な構造を視覚化するには光学顕微鏡で十分かもしれませんが、オルガネラの詳細な構造を視覚化するには電子顕微鏡が必要です。
注： 各手法には、独自の制限と利点があります。多くの場合、研究者は複数の手法を組み合わせて、細胞の構造と機能の包括的な理解を得ることができます。
